Page 26 - 2012no37

Basic HTML Version

分子植物育种
(
网络版
), 2012
,
10
,
1265
-
1277
Fenzi Zhiwu Yuzhong (Online), 2012, Vol.10, 1265
-
1277
http://mpb.5th.sophiapublisher.com
1276
8 41
SSR
引物清单
Table 8 The list of 41 SSR primers
序号
引物
染色体位置
cM
距离
序号
引物
染色体位置
cM
距离
No.
Primer
Chr. No.
cM distance
No.
Primer
Chr. No.
cM distance
1
Xtxp482
SBI01
25.2
22
Xtxp317
SBI06
90.5~90.9
2
gpsb089
SBI01
53.8
23
Xtxp274
SBI06
90.9
3
gap57
SBI01
108.9~109.7
24
Xcup02
SBI09
99.9
4
Xtxp80
SBI02
18~19.7
25
Xtxp17
SBI06
149.3
5
Xcup26
SBI02
166.8
26
Xtxp481
SBI07
31.8
6
Xcup69
SBI02
198.5
27
Xtxp159
SBI07
38.3
7
Xtxp494
SBI03
4.2
28
Xtxp99
SBI07
130.0~130.5
8
Xtxp439
SBI03
127.3
29
Xtxp168
SBI07
131.5~132.8
9
Xtxp421
SBI03
137.4
30
gpsb067
SBI08
66.8
10
Xtxp424
SBI03
147.8~149.9
31
Xtxp516
SBI08
86.8~88.5
11
Xtxp343
SBI04
71.4~75.8
32
Xtxp105
SBI08
97.7
12
Sb1-10
SBI04
87.6
33
Xtxp321
SBI08
104.2
13
Xtxp41
SBI04
106.2~108.0
34
Xtxp289
SBI09
23.5~38.5
14
Xtxp60
SBI04
120.7
35
Xtxp287
SBI09
80.5~85.5
15
Xtxp021
SBI04
153
36
Xtxp258
SBI09
80.5~85.5
16
Xtxp65
SBI05
14.4
37
Xtxp230
SBI09
85.5
17
Xtxp015
SBI05
58.2
38
Xtxp010
SBI09
108.4
18
Xtxp23
SBI05
75.9
39
Xtxp20
SBI10
53.2~54.2
19
SBKAFGK1
SBI05
89.3~95.7
40
Xcup43
SBI10
102.6
20
Xtxp123
SBI05
93.1
41
Xcup07
SBI10
115.2
21
Xtxp6
SBI03
31.6
: cM
距离数据来源于
Mace (2009)
Note: The data of cM distance come from Mace (2009)
三博远志公司合成。
3.2
试验方法
3.2.1 DNA
提取
本实验采用
CTAB
(
余传涨等
, 2010)
并进行
了适当的优化:
1
、称适量样品,液氮下迅速磨成
粉末;
2
、将粉末转入
2.0 ml Eppendorf
管中,加入
65
℃预热的
CTAB
缓冲液
700 µl
,并使其混匀;
3
65
℃水浴加热
45 min
,不断地轻轻倒转摇动。水浴
后,取出离心管,冷却至室温;
4
、通风橱下加入
700 µL
的氯仿:异戊醇
(24:1)
,轻轻倒转摇动
5~10
min
5
、室温下
12 000 rpm
离心
10 min
,用去头枪
尖将上清转至一新
2.0 mL Eppendorf
管中;
6
、加入
10 µL RNA
酶溶液
(10 mg/mL)
37
℃下温浴
30 min
7
、重复
4~5
步骤;
8
、加入-
20
℃预冷的异丙醇或
无水乙醇于
2.0 mL Eppendorf
管中,轻轻混匀。
-
20
℃冰箱静置一段时间后,至
DNA
凝集,室温下
钩出
DNA
9
76%
乙醇洗涤两次,洗涤完毕后,
DNA
晾干;
10
、加入适量的
1
×
TE (PH 8.0)
溶解
于试管中,
4
℃下保存备用。取
2 μL DNA
溶液,用
0.8%
的琼脂糖凝胶电泳检测。
3.2.2 PCR
扩增体系及程序
扩增体系:采用
10 µL
反应体系,其中含
1
×
PCR Buffer
2+
(
2 mmol/LMg
2+
)
100 µmol/L dNTP
0.24 µmol/L SSR
引物,
0.4 U
Taq
DNA
聚合酶,
20 ng
DNA
模板,其余用双蒸水补足。
扩增程序:
94
10 min
1
个循环;
94
1 min
55
1 min
72
1 min
,共
36
个循环
(
根据引物特
点可作适当调整
)
72
10 min
4
℃保存。
(
赵泽双
, 2012)
。扩增反应在
Bio-Rad
公司
MyCycler
TM
PCR
仪上进行。
3.2.3
电泳检测
SSR
扩增产物在
6%
变性聚丙烯酰胺凝胶电泳
上分离。
70W
预电泳
45 min
70W
电泳
45 min
银染:将凝胶板置于
10%
醋酸溶液固定
20 min
;双
蒸水漂洗
3 min
;在
2 L
新配的染色液
(3g AgNO
3
)
中染色
20~30 min
;双蒸水快速漂洗
1
次,时间不
超过
10 s
2L
显影液
(25 g NaOH+7 ml
甲醛溶液
)
显影;
10%
醋酸溶液中定影
5 min
;双蒸水漂洗
5 min
后置于室温下自然晾干。