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分子植物育种
(
网络版
), 2012
,
10
,
1133
-
1137
Fenzi Zhiwu Yuzhong (Online), 2012, Vol.10, 1133
-
1137
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1136
没有转化株。而运用拟南芥心皮不闭合型突变体
(
crc
)
,使转化率提高了近
6
倍。可以推断心皮处于
开放状态的花蕾有利于转化事件的发生。还有研究
表明拟南芥中心皮在开花前
3 d
才闭合,而不结球
白菜“四九菜心”中,心皮早在花蕾开放的
10 d
前就发生了闭合,认为心皮的闭合时间是造成菜心
的转化效率低于拟南芥的主要原因
(Cao et al., 2000)
2.2
植物体内农杆菌的生存
由实验结论得出的另一个推断,是白菜植株体
内的微环境对农杆菌的存活可能是不利的。
CFU
查发现,植株中农杆菌的活力受到了严重的抑制,
涂板后三天内不能培养出大小正常的菌落。相似的
情况在徐恒戬等
(2005)
的研究中也有指出,并表明
无论在花,茎还是叶中,
CFU
数量随着植株处理后
恢复时间的延长迅速减少。
农杆菌在植株体内的长期生存有利于遗传转
化。在植物组织中得以生存的农杆菌可能通过对种
质细胞的转化产生可遗传的转基因植株。
Rakousky
(1997)
等对农杆菌渗透处理后的拟南芥进行了
GUS
瞬时表达研究,发现农杆菌能在处理植株的表面和
内部存活很长一段时间,即便是在处理后
3~6 d
植株中,植物组织中的农杆菌数量仍可以达到
1.2
×
10
8
/g (Rakousky, 1997)
。这说明拟南芥体内的环
境可能有利于农杆菌的存活,一方面也解释了浸花
转化技术中拟南芥为何可以获得较高的转化效率。
3
实验材料与方法
3.1
材料
3.1.1
植物材料
采用不结球白菜“引心
360
”和拟南芥为试材。
3.1.2
工程菌
农杆菌为
C58
菌株,菌株携带的质粒
T-DNA
含有标记基因
bar
(
编码对除草剂
Basta
的抗性
)
GUS
报告基因,具有利福霉素和卡那霉素的抗性。
3.1.3
试剂
实验所用常规试剂及染色试剂均购自北京益
利精细化学公司,
PCR
试剂购自天根生物工程有限
公司,引物由奥科生物工程有限公司合成。
3.2
浸花处理
处理材料为蕾期植株,处理方法参照
Clough
Bent
(1998)
。收集过夜培养的菌体重悬浮在含
0.04% 6
-
BA
0.05% Silwet L
-
77
5%
蔗糖的
1/2MS
液体培养基中,
OD
600
=0.9
。将花序浸没入农杆菌悬浮
液中,浸花时间为
1.5 min
,处理两次,每次间隔
5 d
3.3
种子抗性筛选
将浸花后的植株收得的种子播于苗盘中,于子
叶期喷洒
ppt
浓度为
0.225 g/L
Basta
溶液。一共
喷洒两次,每次间隔
7 d
3.4 GUS
基因的活性检测
取抗性植株的叶片和幼嫩茎杆进行
GUS
表达
稳定性检测,验证目的基因是否已经导入受体植株
(
付绍红等
, 2004)
3.5
处理植株花蕾中农杆菌的培养
浸花处理后的植株,称取花蕾
0.1 g
左右,
3%
次氯酸钠表面消毒
10 min
,花蕾的研磨和提取液的
梯度稀释方法参照徐恒戬等
(2005)
。以未做浸花处
理的植株提取液为对照,将稀释好的花蕾提取液涂
板培养。农杆菌筛选培养基配方:每
1 L
培养基中
含甘露糖醇
15 g
Ca(NO
3
)
2
2H
2
O
20 mg
NaNO
3
5 g
KH
2
PO
4
2 g
LiCl
6 g
MgSO
4
7H
2
O
0.2 g
溴百里酚蓝
0.1 g
,琼脂
15 g
pH 7.2
。高温高压灭
菌冷却后加入卡那霉素至终浓度
100 mg/L
3.6
对花蕾提取液中培养出的菌落进行验证
3.6.1
筛选平板中菌落的形态鉴定
在筛选平板中长出的菌落,已经通过了卡那霉
素的初步筛选。观察生长出的菌落外观是否符合农
杆菌菌落在筛选培养基中的特点。
3.6.2
利福霉素的抗性鉴定
随机挑取农杆菌筛选平板上的单菌落,独立接
种到
1 mL YEB+50 μg/mL Kan+25 μg/mL Rif
的液
体培养基中,
28
℃,
200 r/min
避光过夜培养。观察
培养基的颜色变化,转化所用工程菌由于同时具有
利福霉素和卡那霉素的抗性,会在含有这两种抗生
素的培养基中正常生长
(
徐恒戬等
, 2005)
3.6.3
分子鉴定
采用菌落
PCR
对平板中培养出的菌落进行分
子鉴定,
GUS
基因引物序列如下:
primer-L
5'
-
CAACTGGACAAGGCACTAGCGG
-
3'
primer-R
5'
-
CCATACCTGTTCACCGACGACG
-
3'
PCR
反应
体系
(20 μL)
10
×
buffer 2 μL
dNTP (10 mmol/L)
0.4 μL
Primer-L/R (50 μmol/L)
0.4 μL
plasmid
DNA 100 ng
Taq
1 U