Page 22 - 2011no115

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张双玲等
, 2011,
酶解法制备植物叶绿体
DNA(cpDNA),
分子植物育种
(online) Vol.9 No.115 pp.1843-1846 (doi: 10.5376/mpb. cn.2011.09.0115)
1846
再重复洗涤,白色物质为淀粉沉淀
)
3.3.2 DNase
处理,除去核
DNA
向离心管的沉淀中分别加入
400 μL
左右的缓
冲液
B
,再重新悬浮叶绿体沉淀,并加入适量的
DNase I
,使
DNaseI
终浓度为
250 mg/L
,在
37
℃下
水浴
20 min
,轻轻摇匀,加入
1 mol/L
EDTA-Na
2
(
终浓度为
0.2 mol/L),
终止酶解反应,在
4 000 rpm
(3 700 g)
离心
20 min
,收集沉淀。
3.3.3
裂解
向离心管的沉淀中加入预冷的缓冲液
C 500 μL
重悬叶绿体颗粒,然后再各加入
30 μL 20%
SDS
(
终浓度为
1%)
60
℃水浴,不时摇匀,直到被完全
裂解。
12 000 rpm
,离心
10 min
,取上层液。加等
体积氯仿:异戊醇
—24:1
,摇匀
5 min
12 000 rpm
离心
10 min
,取上层液,加
1/10
体积
5 mol/L NaCl
和等倍体积的异丙醇,
-20
℃放
2~3
个小时或过夜。
4
℃条件下
12 000 rpm
离心
15 min
,弃上清液,用
70%
乙醇洗涤,在温室下晾干,加
30 µL TE
缓冲液
溶解
DNA
,放入-
20
℃保存备用。
3.3.4
电泳检测
5 µL
提取的叶绿体
DNA
0.8 %
琼脂糖凝
胶上用
75 V
电泳
1 h
,
置于凝胶成像系统观察结
果并成像。
3.3.5
限制性内切酶酶切及电泳检测
所获得的
cpDNA
经限制性内切酶
Sam
(TaKaRa
公司
)
酶切。反应体系总体积
50 μL
,其中
cpDNA
样品
10 μL, 10×Buffer 5 μL,
内切酶
20 U,
充无菌水至
50 μL, 37
℃保温过夜。
1.0 %
琼脂糖凝
胶上进行电泳检测。
作者贡献
张双玲是本研究项目的主要执行人,参与了实验设计,
完成论文初稿的写作。何道一是项目的设计者和负责人,指
导实验的实施,论文的写作和修改。全体作者都阅读并同意
最终的文本。
致谢
本研究由安徽省教育厅自然科学研究重点项目
(KJ2011A249)
资助。感谢本实验室硕士研究生陈丽萍协助了
部分实验工作。
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